1.用細胞培養(yǎng)液等量混合效應(yīng)細胞和靶細胞,30℃水浴10分鐘。室溫中250×g離心5分鐘,去上清液。同量靶細胞不加效應(yīng)細胞同樣處理作為對照。
2.用少量細胞培養(yǎng)液輕輕懸浮細胞,吸管上下吹打5~6次。這一分散細胞的步驟關(guān)系到試驗的準(zhǔn)確性和重復(fù)性,應(yīng)當(dāng)設(shè)法保持技術(shù)的一致性。取少許細胞懸液,稀釋后直接在顯微鏡下計數(shù)效應(yīng)細胞和靶細胞的結(jié)合率,即平均每100各淋巴細胞中結(jié)合了靶細胞的效應(yīng)細胞的數(shù)目。
3.其余的細胞懸液與等量液態(tài)(37℃)的0.5%低熔點瓊脂糖混合均勻,鋪在培養(yǎng)皿中,厚度≤2mm。固化后小心加入適量細胞培養(yǎng)液覆蓋瓊脂糖層,置37℃ 5% CO2的飽和水汽二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1~4小時。
4.吸去培養(yǎng)液,加入適量0.1%臺盼藍覆蓋瓊脂糖層,室溫染色5分鐘。吸去染色液,加入適量0.2%甲醛覆蓋瓊脂糖層,室溫固定5分鐘。
5.在顯微鏡下死亡細胞呈藍色,計數(shù)靶細胞的死亡率。靶細胞的自發(fā)死亡率可以從經(jīng)同樣處理的靶細胞對照培養(yǎng)皿中測得。如區(qū)分效應(yīng)細胞和靶細胞有困難,可以用雙醋酸熒光素染色加以區(qū)分。鏡下計數(shù)。
2.用少量細胞培養(yǎng)液輕輕懸浮細胞,吸管上下吹打5~6次。這一分散細胞的步驟關(guān)系到試驗的準(zhǔn)確性和重復(fù)性,應(yīng)當(dāng)設(shè)法保持技術(shù)的一致性。取少許細胞懸液,稀釋后直接在顯微鏡下計數(shù)效應(yīng)細胞和靶細胞的結(jié)合率,即平均每100各淋巴細胞中結(jié)合了靶細胞的效應(yīng)細胞的數(shù)目。
3.其余的細胞懸液與等量液態(tài)(37℃)的0.5%低熔點瓊脂糖混合均勻,鋪在培養(yǎng)皿中,厚度≤2mm。固化后小心加入適量細胞培養(yǎng)液覆蓋瓊脂糖層,置37℃ 5% CO2的飽和水汽二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1~4小時。
4.吸去培養(yǎng)液,加入適量0.1%臺盼藍覆蓋瓊脂糖層,室溫染色5分鐘。吸去染色液,加入適量0.2%甲醛覆蓋瓊脂糖層,室溫固定5分鐘。
5.在顯微鏡下死亡細胞呈藍色,計數(shù)靶細胞的死亡率。靶細胞的自發(fā)死亡率可以從經(jīng)同樣處理的靶細胞對照培養(yǎng)皿中測得。如區(qū)分效應(yīng)細胞和靶細胞有困難,可以用雙醋酸熒光素染色加以區(qū)分。鏡下計數(shù)。